操作步骤： 1. 在 1.5-2.0ml离心管中，加入15µl Proteinase K溶液。 注意：Proteinase K溶液不能与Buffer BL先混合。 2. 转移250μl抗凝的血液，血清，血浆或其它体液样品至蛋白酶的离心管中。轻轻振荡混匀。若血液小于250μl，用PBS或Buffer ATE调整总体积至250μl。 3. 加入250μl Buffer BL至样品中。盖上盖子，颠倒3~5次，最高速度涡旋混匀15-20秒。后56℃水浴15分钟，其间涡旋混匀2~3次。 注意：涡旋时须让裂解液与血液充分混匀才能保证裂解效果。 4. （可选步骤）若需去除RNA，加入10µl RNaseASolution至裂解液中，室温静置10分钟。 5. 加入250μl无水乙醇至裂解样品中，盖上盖子，快速颠倒3~5次，涡旋混匀30秒。 6. 把DNA结合柱装在2ml收集管中。转移混合液至柱子中，并以10,000×g离心1分钟。 7. 倒弃流出液，把柱子重新装回收集管中。加入500μl Buffer IRB至柱子上并以10,000×g离心1分钟。 8. 倒弃流出液，把柱子重新装回收集管中。加入500μl Buffer BW（请先检查是否已加入无水乙醇）至柱子中，10,000×g离心1分钟。 9. 重复操作步骤8一次。 10. 倒弃流出液，把柱子重新装回收集管中。12,000×g离心空柱2分钟，以甩干柱子的残留物质。(这一步要尽量提高离心速度以减少乙醇的残留)。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱放置到新的灭菌的1.5ml EP管中，并打开盖子于室温放置数分钟（约10分钟），以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。 11. 将柱子转移至新的1.5ml无菌的离心管(自备)，加入30~100µlBuffer ATE至柱子的膜中央，静置2分钟后以12,000×g离心2分钟收集离心下的基因组DNA。 Buffer ATE在55-60℃预热后加入膜中央洗脱可提高核酸获得率。 12. 弃去柱子，将基因组DNA溶液于-20℃保存（短期可保存2-8℃）或进行下游实验。 附加方案：处理 0.25-1ml的血液DNA抽提(注:该方案需要另外订购Buffer RBC) 1. 转移0.25-1ml抗凝血液样品至2-15ml离心管中。 2. 加入2.5倍体积Buffer RBC至样品中，颠倒混匀5-10次并静置3分钟。 3. 2,000×g离心5分钟。小心倒弃上清液，并反扣于吸水纸上吸尽残液。（注：倒弃上清液时，小心不要倒弃细胞核沉淀。） 4. 加入250µl灭菌水和25µl蛋白酶K溶液到样品中。涡旋30秒打散沉淀团。 5. 按前述第9步加入Buffer BL开始进行操作。