操作步骤： 1. 用无酶水将样品调整到100µl的体积，后往其中加入350μl Buffer RLT并混匀。 2. 往混匀的样品中加入250µl无水乙醇(96–100%)，并通过反复吹打混匀。不要离心，并立即进行下一步操作。 3. 将步骤2混匀后的溶液转移入RNase-free吸附柱中并套上2ml收集管，≥8000×g (≥10,000 rpm)离心30s，弃废液。 吸附柱最大上柱量为700μl，若溶液过多可分多次上柱。后续操作若无特殊说明吸附柱均置于2ml收集管中。 4. 向吸附柱中加入500μl Buffer RPE（使用前请确认Buffer RPE是否按要求加入4倍体积无水乙醇），≥8000×g(≥10,000 rpm)离心30s，弃废液。 5. 重复步骤6一次。 6. 倒弃滤液，将吸附柱放入收集管中,以最大转速(~13,400×g)离心3min干燥柱膜。 7. 将吸附柱套入新的无酶1.5ml离心管中，并置于无酶的环境中开盖静置5-10min至乙醇晾干。 若吸附柱中残留乙醇将会对纯化后的RNA的下游实验造成影响。 8. 向吸附柱膜正中央加入30-500μl RNase-free Water，盖上盖子室温静置2-3 min。后置于离心机中以最大转速(~13,400×g)离心3min得到RNA溶液。 RNA洗脱体积不应少于30μl，否则影响洗脱效率。洗脱后的RNA溶液应置于-80℃储存。