组分 装量
SUMO蛋白酶(2U/μl) 100μl
10× SUMO Protease Buffer (Salt plus) 1.0mL
10× SUMO Protease Buffer (Salt free) 1.0mL
概述:SUMO蛋白酶 (SUMO Protease),也称ULP蛋白酶,是一种高活性的半胱氨酸蛋白酶(1),它能够高效地把SUMO (Small Ubiquitin-like Modifier) 从融合蛋白上切割下来。不同于大多数蛋白酶 (识别位点为氨基酸序列),SUMO蛋白酶识别SUMO蛋白的三级结构,所以具极高的特异性(2,3)。SUMO融合蛋白经SUMO蛋白酶切割后,无末端残留残基,可以获得具有自然氮末端的目标蛋白 (氮末端为脯氨酸的除外)(4)。SUMO蛋白酶的最适反应温度为30°C,可以在较为宽范围的反应体系 (温度4-30°C,pH 5.5-9.5) 中保持活性,并且对部分蛋白变性剂有一定的耐受能力(4) (详见下文)。本公司的Sumo蛋白酶具有多聚组氨酸标签 (polyhistidine tag),便于融合蛋白切割后的亲和层析纯化。
来源:重组E. coli菌株,含有酿酒酵母Ulp1基因片段。
酶活性单位定义:在30°C条件下反应1小时,切割100 µg的反应底物 (SUMO-eGFP) 达90%以上所需的酶量定义为一个活性单位。
溶液成分:
SUMO蛋白酶贮存液:
25 mM Tris-HCl (pH 8.0 @ 25°C)
1% IGEPAL CA-630 (NP-40) ®
250 mM NaCl
50 μM DTT
50% (v/v) 甘油
10× SUMO Protease Buffer (Salt plus):
500 mM Tris-HCl (pH 8.0 @ 25°C)
2% IGEPAL CA-630 (NP-40) ®
1.5 M NaCl
10 mM DTT
10× SUMO Protease Buffer (Salt free):
500 mM Tris-HCl (pH 8.0 @ 25°C)
2% IGEPAL CA-630 (NP-40) ®
10 mM DTT
推荐反应体系:
反应物 |
体积 |
SUMO融合蛋白 |
10 μl (10 μg[#]) |
Sumo Protease |
1 μl (2 U/μl) |
10× SUMO Protease Buffer +/- Salt |
10 μl |
水 |
79 μl |
总体积 |
100 μl |
[#]:1 U Sumo蛋白酶在30°C条件下反应1小时,可以切割大于90 µg的反应底物 (SUMO-eGFP) ,但对于其它底物的切割效率可能会有差异,初次反应推荐使用1 U的Sumo蛋白酶切割10 μg底物。
各温度下的参考反应时间:
4°C反应, 15-16小时
16°C反应, 4小时
25°C反应, 1.5小时
30°C反应, 1小时
贮存条件:长期贮存于-80°C,或解冻后保存于-20°C,避免反复冻融,可稳定保持活性1年以上。
注意事项:
1. 常用化学品对SUMO蛋白活性的影响(4):
化学品 |
浓度 |
SUMO蛋白酶酶活 (%) |
Phosphate-buffered saline (PBS) |
1× |
100 |
DTT或β-巯基乙醇 |
20 mM |
100 |
|
150 mM |
100 |
|
500 mM |
60 |
NaCl[*] |
1 M |
30 |
尿素 |
1 M |
100 |
|
2 M |
95 |
|
3 M |
5 |
|
500 mM |
60 |
|
1 M |
0 |
Triton X-100 |
1% |
100 |
咪唑 |
300 mM |
100 |
GSH (还原型谷胱甘肽) |
20 mM |
100 |
麦芽糖 |
20 mM |
100 |
甘油 |
20% (v/v) |
100 |
乙二醇 |
20% (v/v) |
100 |
蔗糖 |
20% (v/v) |
100 |
乙醇 |
10% (v/v) |
100 |
[*]对于大部分融合蛋白,SUMO蛋白酶反应体系中NaCl的推荐浓度为150 mM。然而,根据实际情况可在100 mM~300 mM之间调节NaCl的浓度以达到最佳的效果。请务必考虑到酶储液中的盐浓度和底物中的盐浓度。
2. 当融合蛋白中SUMO蛋白碳末端甘氨酸后的残基为脯氨酸时,SUMO蛋白酶无法切割(4)。
参考文献:
1. Li, S.J. and Hochstrasser, M. (1999) Nature, 398, 246-251.
2. Müller, S., Hoege, C., Pyrowolakis, G. and Jentsch, S. (2001) Nature Rev. Mol.Cell Biol., 2, 202-210.
3. Mossessova, E. and Lima, C.D. (2000) Mol. Cell, 5, 865-876.
4. Panavas, T., Sanders, C., and Butt, T.R. (2009) Methods Mol. Biol., 497, 303-317.